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血培养直接药敏

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发表于 2007-8-10 14:34 | 显示全部楼层 |阅读模式

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血培养阳性标本取血做直接药敏,可以将药敏报告时间缩短24-36h(JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY, Oct. 1979, p. 482-487),但直接药敏与标准药敏方法之间存在5-15%的误差,想问问大家如何看待这个问题?你们实验室做不做直接药敏?血液做药敏前如何处理?(采血直接滴于药敏平板、血液经洗涤离心后涂药敏平板或血液增菌后调节浊度)。
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发表于 2007-8-10 19:25 | 显示全部楼层
我们是采用双相培养基固相上的菌落或者经过差速离心分离出纯菌后再用生理盐水悬浮调节至0.5麦氏浊度后进行的.和标准方法的确有一些差异,所以最后还是要以标准操作结果发一份最终报告.
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发表于 2007-8-10 21:02 | 显示全部楼层
我们也是用的双相瓶,直接取固相菌落做药敏,所以不存在你所说的问题。:)
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 楼主| 发表于 2007-8-11 14:05 | 显示全部楼层
我们用的是BD的含树脂血培养瓶,不是双相的。文献中说,血直接药敏出现误差的主要原因在于细菌接种量,同时血培养瓶中的某些物质对药敏纸片的药物活性也有影响。现在标准的血液前处理方法是:从阳性血培养瓶中取5ml血液160×g离心5分钟以沉淀血细胞,然后取上清液650×g离心10分钟以沉淀细菌,调节细菌悬液的浊度至0.5麦氏单位。该方法过于繁琐。香港,台湾是取一些血液打入营养肉汤增菌后做直接药敏。我还没查到关于不同血培养直接药敏方法评估的文章,想在网上求助一下。
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发表于 2007-8-14 19:20 | 显示全部楼层
原帖由 莲雾 于 2007-8-11 14:05 发表
我们用的是BD的含树脂血培养瓶,不是双相的。文献中说,血直接药敏出现误差的主要原因在于细菌接种量,同时血培养瓶中的某些物质对药敏纸片的药物活性也有影响。现在标准的血液前处理方法是:从阳性血培养瓶中取 ...

讲得很好!90年我曾做过一批直接药敏试验,主要针对血培养增菌液及尿液,当时发现头孢类药物与标准K-B法在较大差异,其它药物尚可,后来由于临床实际做的并不多,所以样本量有限没继续往下研究,但同期国外做了大量研究,包括将血培养增菌液直接接种在商品化的鉴定药敏板中,这其中的接种菌量确实很重要,所以直接镜检可起到导航的作用,以下是我普在微生物之家发的一个贴子,对于一定菌量在镜下的感性认识或许对大家会有所启发:http://www.microbiohome.com/foru ... replyID=&skin=1
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发表于 2008-2-16 13:08 | 显示全部楼层

回复 #1 莲雾 的帖子

血培養直接藥敏試驗由於會產生誤差 ,建議應採用隔日次純培養進行KB法.
但是陽性血培養對臨床醫師處理病患,最重要的還是實驗室即時的革蘭染色結果
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发表于 2008-3-5 06:11 | 显示全部楼层
分级报告制是微生物检验的发展之必然,仔细观察本人周边的尚未实行,但愿这种趋势早日来临:) :handshake .....
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发表于 2008-3-5 12:23 | 显示全部楼层
原帖由 莲雾 于 2007-8-10 14:34 发表
血培养阳性标本取血做直接药敏,可以将药敏报告时间缩短24-36h(JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY, Oct. 1979, p. 482-487),但直接药敏与标准药敏方法之间存在5-15%的误差,想问问大家如何看待这个问题?你 ...

直接药敏仅仅是初步药敏,细菌分纯后还得做规范药敏.
在常规工作中,我们对血液\脓性尿液\伤口分泌物都做过直接药敏,至于与规范药敏究竟有多少误差,没有做过比对.
血培养直接药敏的类似外文文献我也读过几篇.建议你再搜索一下.
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发表于 2010-6-2 23:09 | 显示全部楼层
直接药敏仅仅是初步药敏,细菌分纯后还得做规范药敏
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发表于 2010-10-13 15:42 | 显示全部楼层
直接涂片还是对镜检意义较大。如果直接做药敏,恐怕误差大了,不好解释。
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