血培养要求双侧双瓶，有无相关文件？
血培养要求双侧双瓶，有无相关文件？ 基于捕捉血液标本中细菌接种单位量之需。相关文件是人定的作为参照物文字记载，其基础源自于实践。谢谢！ 这是我们省的一份资料，供楼主老师参考。广东省血培养指导原则（2008）
Principles and Procedures for Blood Culture of GD Province
2008年7月
目录
1. 前言
2. 重要定义及缩写解释
3. 血培养的重要性
4. 标本收集和运输
5. 方法和程序
6. 特别提示
7. 结果报告
8. 实验室质量保证
9. 参考文献
1前言
血培养阳性是微生物实验室危急值报告项目。血培养的标准化操作对提高该实验的可靠性至关重要。本指导原则将对广东省各级医疗机构血培养的采集、运输、实验流程等方面提出标准化的要求和建议。
2重要定义及缩写解释
SIRS：全身炎症感染综合征。当病人具有以下多于一条的临床表现和(或)实验室检查结果时，可以定义为SIRS。
①体温：>38℃或<36℃；
②心率：>90次／分；
③呼吸频率>20次／分或二氧化碳分压(PaC02)<32mm Hg；
④白细胞计数：>12x 10 9／L或<4x lO 9／L 。
CRBSI：导管相关性血流感染。
VAD：静脉留置管。
VAP：静脉留置口。
SPS：聚茴香脑磺酸钠。
AIDS：获得性免疫缺陷综合征。
LIS系统：实验室信息管理系统
HIS系统：医院信息管理系统
败血症：即感染性SIRS，是致病菌或条件致病菌侵入血循环中生长繁殖，产生毒素和其他代谢产物所引起的急性全身性感染。
菌血症：血液中出现细菌或者真菌。
注：该细菌或真菌可能是败血症／潜在败血症的病原菌或污染菌。
持续性菌血症：如细菌性心内膜炎、CRBSI。
假阳性：对某种不存在的疾病或状态却呈现了阳性的结果。
注：对于血培养有两种情况：
①培养出的细菌或真菌被确定为人为污染(如皮肤消毒、转种等操作不当)所致。
②呈现细菌或真菌生长的迹象(如：自动化仪器阳性报警)，但是在转种和染色中未见细菌或真菌。
一套血培养：一次成功静脉穿刺所获得的血液被分配到相应的几个血培养瓶或培养管内，这几个血培养瓶或培养管统称为一套血培养。本指导原则内描述的一套血培养包括一个需氧血培养瓶和一个厌氧血培养瓶。
一份血培养采血量：一次成功静脉穿刺获得足够多的血液，作为一套血培养的标本。
血量不足：一次静脉穿刺所获得的血液量，少于最小推荐采血量的80％。
3 血培养的重要性
3．1诊断重要性为确诊病因和正确使用抗菌药物进行治疗提供重要依据。
3．2预报重要性从预报学角度讲，血培养阳性预示将感染限制于机体某特定部位的治疗处理失败或局部感染已扩散。
4标本收集和运输
4．1采血时机
※要求和建议：疑为菌血症的患者，在使用抗茵药物之前，应立即采集2套或以上的血培养标本。对于疑似持续性菌血症患者应采用间隔式采血法进行采集。
研究认为致病菌在菌血症患者出现寒战和发热前1小时入血。对于一过性菌血症患者，在24小时内每隔30~60分钟内所抽取的血培养标本之间并无显著性差异。间隔式采血法只适用于持续性菌血症。
4．2血培养次数
※要求和建议：对于疑似菌血症的成年患者，建议采集2～3份血培养标本。除细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症患者外，没有必要在2到5天内重复采集血培养标本作为治疗跟踪。
强烈要求：****不能只做一套血培养!
2004年，有学者对163例高度疑似菌血症患者进行血培养研究。共采血3次，每次采血量为20ml。一套血培养阳性率为65％，二套血培养阳性率为80％，三套血培养阳性率为96％。多套血培养可以提高菌血症患者的病原菌检出率和帮助排除血培养的假阳性。
另外，抗菌药物治疗不能在2到5天内立即清除致病菌，因此，对于菌血症患者没有必要在此期间重复送检作为治疗跟踪。但是，细蔺性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症仍需要利用血培养作治疗跟踪。
4．3血培养采血量
※要求和建议：以一份血培养为单位。
成年患者每份采血量为20～30ml。
婴幼儿每份采血量不能超过其自身总血容量的I％。
血培养的采血量是影响检出率的最重要因素。****血培养阳性检出率在采血量2～30ml之间时是成正比例增长。
4．4需氧血培养瓶和厌氧血培养瓶的血量分配
※要求和建议：一套血培养包括一个需氧血培养瓶和一个厌氧血培养瓶。
当一份血培养采血量不能达到建议所要求的血量时，应首先满足需氧血培养瓶的标本量需要，剩余血液全部注入厌氧血培养瓶。
采用一套血培养组合(一个需氧血培养瓶加一个厌氧血培养瓶)，比采用两个需氧血培养瓶的组合更能提高葡萄球菌、肠杆菌和厌氧菌的检出率。而且，使用双瓶组合可以保证足够的采血量2-4。对于仅使用需氧血培养瓶的实验室，为保证采血量，必须采用两个需氧血培养瓶的血培养组合。
4．5皮肤消毒和预防血培养污染
※要求和建议：建议使用碘酊或者洗必泰。
各单位可根据实际情况，选用消毒效果相当的皮肤消毒剂，且严格按选用产品的说明书进行操作。
在过去50年里，70％医用酒精、碘酊、碘伏、次氯酸和洗必泰等被作为皮肤消毒剂。
针对这些皮肤消毒剂已有不少的对比性研究文献，结论可以总结为以下两点：
①碘酊、次氯酸和洗必太的消毒效果要胜于碘伏。
②碘酊和洗必泰的作用大致相等。
消毒剂要求有足够的作用时间以保证消毒效果。碘酊要求30秒，碘伏要求1．5～2分钟。洗必泰要求的消毒作用时间与碘酊相等，而且没有过敏反应，消毒后不必擦去，但不能用于小于2个月的婴儿。
4．6血培养标本的采集
※要求和建议：采用无菌注射器采集血液，再转入血培养瓶或培养管中。
接种血液后的培养瓶或培养管必须轻柔颠倒混匀数次以防止血液凝固。
血培养操作标准可以接受的污染率应≤3％。
使用真空采血针(蝴蝶针)将患者静脉与血培养瓶直接连通的操作方法，将难以控制采血量，并且可能出现培养肉汤返流入血的情况。故本指导原则不推荐该种操作方法。
血液标本必须来源于静脉而不是动脉。在静脉留置导管或留置口抽取的血液标本有较高的污染风险，必须与来自静脉的血液标本的培养结果进行联合分析。
在采血前，先用70％医用酒精消毒培养瓶盖并风干。紧接着进行皮肤消毒，先使用70％医用酒精消毒并风干，再使用推荐消毒剂进行消毒。整个过程必须严格执行无菌操作。如没有佩戴无菌手套，不允许按压消毒后的静脉。
4．7血培养标本的运送
※要求和建议：血液接种入培养瓶或培养管后必须在2小时内送到实验室。
接种前后的血培养瓶均不得冷藏或冷冻。
接种后2小时仍未送到实验室的血培养标本，应该在室温(15℃～25℃)保存。实验室收到延迟送检的血培养标本时，应登记相关记录本并在培养瓶上作特殊标记，再装载到培养箱中，以便随后的结果分析。 ‘
4．8血培养标本的拒收标准
遇到以下情况时，实验室应拒收，并立即向相关临床科室进行口头(电话)通知，要求重新采样后再送检：
①标签错误或未贴标签。
②血培养瓶或培养管破损或渗漏。
③血液凝固。
④血液用SPS以外的抗凝剂抗凝。
如果实验室被相关临床科室要求，继续对应拒收标本进行检测时，实验室应对此情况进行详细记录，并在回送的结果报告单中进行相关说明。
5方法和程序
5．1影响血培养病原菌检出率的因素
5．1．1血量
※要求和建议：监控血培养的送检量和向临床提供反馈是实验室质量保证计划的一项重要指标。
血培养阳性检出率与血培养的采血量直接相关。每毫升****血液中菌落形成单位(CFU)是其主要因素。因此增加血培养的采血量可以增加阳性检出率。儿童的血液中每毫升CFU高于****，因此送检血量应参照儿童总血容量和年龄。此外，实验室也应考虑其选用的商业化血培养产品所推荐的采血量。当送检的采血量少于推荐采血量时，可能导致血培养阳性检出率下降。当实验室不得不对此类标本进行培养时，必须在回送的结果报告单中进行相关的解释说明。
5．1．2血液与肉汤比例
※要求和建议：血液与肉汤体积比例为l：5～1：10 。
某些商业化的血培养系统其推荐比例低于该比例也是可取的，因为该商业化的培养基中添加了其他成分可消除抑制作用。
儿童的血培养须采用专用儿童瓶以符合儿童的采血量的要求。
人体血液中含有某些物质可以抑制细菌的生长，如补体、溶菌酶、吞噬细胞、抗体和抗菌药物。因此用于培养的血液和肉汤的比例必须恰当，以便稀释和减少这些物质的抑制作用。
5．1．3培养基
多种商业化的培养基可用于血培养。含不同改良配方的商业培养基可以提高血培养的阳性检出率，但现在暂时没有一种培养基配方可以检出所有的病原菌。无论实验室使用的是商业化培养基还是自配培养基，都应定期对使用的培养基进行质控。
注：培养基的质控方法请参阅CLSI M22文件。
5．1．4抗凝剂
※要求和建议：血培养只能使用SPS作为培养基抗凝剂。
抗凝剂中SPS是最常用于血培养，并有提高对革兰阳性和阴性菌的检出率和加快检出速度的作用。其他抗凝剂如肝素，乙二胺四乙酸(EDTA)和枸橼酸对病原菌有毒性，不能被用于血培养样本采集和培养。
5．1．5添加剂(抗凝剂、树脂、活性碳)
SPS有提高对革兰阳性和阴性菌的检出率和加快检出速度的作用，因此尽管某些商业化系统的SPS浓度低至0．006％，但常见的SPS浓度范围应为0．025到0．05％。而且，SPS可能抑制某些细菌，包括奈瑟氏菌属、消化链球菌属、卡他莫拉菌、阴道加德纳菌生长5-6。 SPS仍是血培养中最常见且被推荐使用的抗凝剂。肝素、jEDTA和枸橼酸对病原菌有毒性，不推荐用于血培养的抗凝。
某些商家在其试剂中添加抑制物结合剂或吸附剂，用于提高己接受抗菌药物治疗患者的血培养阳性检出率。但是，这种培养基会比没有添加抑制物结合剂或吸附剂的培养基更昂贵，而且可能会有更高的假阳性率，同时也增加了实验室为处理假阳性标本所花的费用。
5．1．6培养环境
5．1．6．1温度
最适温度：35℃至37~C。
5．1．6．2培养周期
※要求和建议：手工法为7天，自动化仪器法为5天。
如送检血培养申请单中明确疑为真菌感染，或者反复血培养培养阴性，而
又具有明显系统性炎症临床症状患者，应适当延长此类血培养的培养时间
(多数双相真菌可在商品化的肉汤需氧瓶中生长，孵育时间需2～4周)。
对于常规手工培养，推荐培养周期为7天。一些生长缓慢的、苛养的致病菌，如军团菌、布鲁氏菌、奴卡氏菌和双相真菌可能需要更长的培养时间。自动化仪器将血培养〔包括布鲁氏菌杆菌、流感嗜血杆菌属、放线杆菌属、人力杆菌属、侵蚀艾肯菌、金氏菌属、营养变异链球菌(如乏养链球菌和颗粒链球菌)〕的培养周期缩短到5天。尽管有研究表明95％～97％具有临床价值的细菌会在3～4天内被自动化血培养系统检出，但仍然建议采用5天的培养周期。关于细菌性心内膜炎的处理方法可见“6．3特别提示”中的“细菌性心内膜炎”。
5．1．6．3摇动培养瓶
研究表明恰当地摇动需氧培养瓶，尤其在血培养头24小时能有效增加病原菌的繁殖和缩短报告阳性时间(尤其是采用手工培养法的实验室)。
5．1．6．4监测频率和转种
※要求和建议：自动化仪器法：根据厂方设定，每10～24分钟自动监测一次，无阳性报告的培养瓶无需转种，共连续监测5天。
手工法：在培养周期前2天每隔12～24小时必须肉眼观察1次，每天2次。培养周期后3～7天，每天肉眼观察1次。共连续观察7天。
在出现明显阳性提示信息前，不建议反复抽取培养液进行涂片或盲传，以避免发生污染。
肉眼判断培养阳性的方法包括：
①血与肉汤的混合物出现浑浊。
②在血液层上有絮状沉淀，某些链球菌在沉积的红细胞表面上会有小“棉球样”生长。
③肉汤内出现浑浊生长。
④肉汤表面有薄膜生长。
⑤出现溶血。
⑥产生气体，许多发酵菌可产气，梭菌属会产生大量的气体，出现明显的溶血现象。
⑦血液层表面或深层有白色颗粒。
⑧液体培养基凝固。
应首先从阳性培养瓶抽取培养液进行革兰染色，再根据染色结果选择合适的培养基和培养环境。
表1. 根据革兰染色特征选择转种培养基类型的建议
染色特点 5% ~ 10%CO2孵 育a
血琼脂 巧克力 中国蓝或麦
琼脂 康凯或EMB 厌氧气体孵育 a
血琼脂 PEA或CAN
革兰氏阳性
球菌 X X X
杆菌 X X X
革兰氏阴性
球菌 X X X X
杆菌 X X X X X
真菌b X X
注：a：所有培养至少孵育48小时。EMB：伊红美蓝琼脂；PEA：苯乙基醇琼脂；
CAN：黏菌素一萘啶酸琼脂；
b：增加真菌培养基(如：沙保弱葡萄糖琼脂)和30~C孵育；x：选择的培养基。
——摘自《临床微生物学血培养操作规范》中华检验医学杂志2004年2月第27卷第2期
5．2血培养方法
血培养有手工法和自动化仪器法两种。
5．2．1血培养手工法
※要求和建议：血液与肉汤最适比例为l：5至1：10，
最适培养温度为35℃。
血培养周期必须为7天。
在培养周期前2天每隔12～24小时必须肉眼观察1次，建议每天2次。
培养周期后3～7天，每天肉眼观察1次。
当血培养出现阳性时，应根据具体情况，选择合适培养基进行转种 (请参阅
“监测频率和转种”中表l的内容)。
5．2．2血培养自动化仪器法参照所选用产品的厂商指南。
5．3保存菌株备用
※要求和建议：所有的分离株(污染株除外)应该至少保存7～10天。
请按照国家和地方法规要求，谨慎处理可在人群中传播的高致病性菌株。
血培养分离菌株可用于研究、临床、流行病学、教育、微生物学、治疗学以及商业用途。实验室应该逐步完善对菌株的短期和长期保存能力。所有的分离株(污染株除外)应该至少保存7～10天。短期保存细菌或真菌，最简单的方法是室温保存在琼脂培养基上。保存于5～8℃可减少菌株变异的可能性。超低温(例如：-70℃)或冻干保存是最佳的长期保存方法。
保存引起重复感染或感染复发的菌株尤其重要。该类菌株往往由于抗生素的治疗而导致耐药模式的变化，出现前后矛盾的药敏结果。
5．4真菌血培养
广谱抗生素的滥用，免疫抑制性疾病和介入性治疗的增加使真菌血症呈上升趋势。血液最常分离到的真菌是白色酵母样真菌、光滑酵母样真菌、热带酵母样真菌、近平滑酵母样真菌以及新型隐球菌。马尔尼菲青霉菌是最常分离到的双相真菌。曲霉菌是最常分离到的霉菌。
需氧血培养瓶比厌氧血培养瓶更有利于真菌的生长。大多数酵母或酵母样真菌培养时间为2～5天。多数双相真菌可在商品化的肉汤需氧瓶中生长，孵育时间需2～4周。
5．5分枝杆菌血培养
在血液中培养出分枝杆菌常见于AIDS或其它免疫缺陷病的病人。在发展中国家，越来越多的报告报导在免疫缺陷病人血液中分离到结核分枝杆菌。相反，在发达国家最常分离的分枝杆菌是鸟分枝杆菌复合体(MAC)。由于分枝杆菌生长缓慢，阴性结果的培养周期不得少于4周。
手工法：经过溶血步骤的血液才能接种到培养基上。
分枝杆菌在不同培养基上生长速度的比较：肉汤培养基>双向培养基>固体培养基。
自动化仪器法：培养基以肉汤为基础添加各种生长因子和抗菌药物，有利于提高分枝杆菌的生长速度。
6特别提示
6．1儿童血培养
※要求和建议：除特殊诊断除外，只需采用需氧培养瓶。
儿童的采血量不能超过其自身总血容量的1％。
不同于****血培养，由于儿童患者极少发生厌氧菌感染，因此建议只需采用需氧血培养瓶。厌氧培养只针对特殊的高危人群，包括疑受母婴垂直传播的绒膜炎、慢性宫颈炎、破伤风等感染和接受类固醇治疗的儿童。
因皮肤消毒而残留在皮肤表面的碘类复合物必须洗去。大于2个月的儿童建议用洗必泰。2月以下的婴儿仅建议采用70％医用酒精。
6．2导管相关性血流感染(CRBSI)
由于患者出现发热症状，75～85％的导管被不必要地摘除。我们必须仔细分析是否有摘除外科置入性导管的必要。导管部分的定量培养是区别CR-BSI、皮肤污染、导管定植菌、以及其他来源的感染的最准确方法，同时，无需配对的导管部分定量培养也是最节约成本的方法，尤其是针对长期导管置入的病人。CR-BSI的诊断有赖于导管部分的定量培养，但是决定是否摘除或更换导管，需要比较同时采样的静脉穿刺血培养的结果。
6．2．1短期外周导管
此类导管通常是由于导管外表面的定植菌引起感染。通过静脉穿刺采集2套血培养和用Maki半定量培养法对无菌操作拔出的导管进行培养。
培养结果的解释：
①如果一套或多于一套的血培养结果是阳性，并且导管片段的培养也是阳性(半定量培养菌落数≥15个菌落)并且为同一种菌，提示为CR-BSI。
②如果一套或多于一套的血培养是阳性，但导管片段的培养是阴性提示，不能诊断CR-BSI；但如果分离出的菌株是金黄色葡萄球菌或酵母样真菌，并缺乏任何其它部位感染的证据，则也可能是CR-BSI。
③如果两套血培养均为阴性，但导管片段培养是阳性，不管菌落计数的结果如何，提示为导管定植菌，而非CR-BSI。
④如果两套血培养均为阴性且导管片段培养也是阴性，则不可能是CR-BSI。
6．2．2隧道式或非隧道式中心静脉导管和静脉留置口
方法l：
对怀疑是CRBSI的患者至少做2套血培养。从静脉穿刺采血至少一套并作明确标记，从导管中心或VAP隔膜采血另一套并作明确标记。无论是从静脉还是从导管中心或VAP隔膜采血都必须无菌操作。两套的采血时间尽可能一致。
培养结果解释：
①如果经细菌鉴定和药敏谱确认，两套阳性血培养都是同一种菌，若没有任何其它部位感染的证据，提示CRBSI。
②如果经细菌鉴定和药敏谱确认，两套阳性血培养都是同一种菌，并且从导管采血的血培养报阳时间比从静脉采血的血培养报阳时间提早≥120分钟，若没有任何其它部位感染的证据，提示CRBSI。如果从导管采血的血培养报阳时间比从静脉采血的血培养报阳时问提早≤120分钟，CRBSI仍然是可能发生的。
③如果两套血培养都是阳性，并且导管采血的血培养菌落含量(CFUs／m1)至少是静脉采血的血培养的5倍，若没有任何其它部位感染的证据，提示CRBSI。这种方法需要手工的定量血培养方法，如溶菌离心法。
④如果只有从导管采血的血培养是阳性，不能定为CRBSI。提示可能是导管的定植菌或者是采血过程中污染所致。
⑤如果只有从静脉采血的血培养是阳性，不能确定CRBSI。但如果分离出的菌株是金黄色葡萄球菌或酵母样真菌，且没有任何其它部位感染的证据，提示CRBSI。实验室要报告CRBSI要求导管片段的半定量或定量培养结果为同一菌，或在没有任何其它部位感染的证据情况下再次从导管采血或再次从静脉采血培养出阳性结果，而且是同一株菌。
⑥如果两套都是阴性，不可能是CR-BSI。
注：该方法适用于希望保留导管的病人。
方法2：
静脉穿刺采集2套独立的血培养(两个部位)。摘除可疑的导管，剪一段长度为5厘米的导管片段，并送到实验室进行Maki’s半定量平皿滚动法培养，或者在震动或超声处理后进行定量培养。无论是静脉采血还是摘除和剪取导管片段都必须无菌操作。
培养结果的解释：
①如果有一套或多于一套的血培养及导管片段培养是阳性，经细菌鉴定和药敏谱确认为同一种菌，提示可能是CRBSI。
②如果有一套或多于一套的血培养是阳性，但导管片段的培养是阴性，如果分离的菌株是金黄色葡萄球菌或者酵母样菌属，并且没有任何其它部位感染的证据，提示可能为CRBSI。实验室要报告CRBSI则需要再一次从静脉采血，并获得同一种菌的阳性培养，且没有任何其它部位感染的证据。
③如果两套血培养都是阴性，但导管片段的培养为阳性，提示可能是导管上的定植菌，不支持CRBSI。
④如果所有的血培养和导管片段的培养是阴性，不可能是CRBSI。
注：该方法适用于已决定摘除导管的病人。
6．3细菌性心内膜炎
本章节专用于指导感染性心内膜炎的血培养流程。采用正确的血培养操作流程，90%以上的细菌性心内膜炎患者可获得血培养阳性结果’。
6．3．1采血时机
采血时机是明确诊断的第一重要因素。疑似急性心内膜炎患者，必须在经验使用抗菌药物前30分钟之内连续采集多套血培养。疑似亚急性心内膜炎患者，不必在经验用药前采集血液，建议在30分钟至l小时之内连续采集数套血培养，该方法可证明细菌感染的连续性，向临床提供更多的诊断依据。
6．3．2皮肤消毒
对于判断是否患有亚急性心内膜炎，充分的皮肤消毒尤其重要。因为针对心瓣膜置换的亚急性心内膜炎患者，其主要的病原菌为皮肤定植菌如凝固酶阴性的葡萄球菌。基于同样的理由，血培养必须取自外周静脉而不是留置导管。取自留置导管的血培养会伴有很高的污染风险从而导致错误的心内膜炎诊断。
强调：采用正确充分的皮肤消毒，从不同的外周静脉部位分别采集血培养，不能从留置导管采血。
6．3．3抽取血培养的数量
※要求和建议：首先采集3套血培养，如果在24小时内无阳性报告，则继续采集2套血培养，一共需要做5套血培养。必须根据实际情况确定最佳的血培养套数，但是只做一套血培养肯定不足以诊断细菌性心内膜炎。
多次血培养可以帮助区别假阳性，而且更大的采血量可以提高阳性检出率。
强调：更大的采血量是提高阳性检出率的唯一重要因素。
由于亚急性心内膜炎患者血培养具有较高的阳性检出率，3～5套血培养应该已经足够。如果5套血培养后仍没有得到阳性结果，应该考虑其他的临床诊断。
6．3．4培养基的选择
没有任何培养基配方可以适合所有细菌的生长。采用需氧血培养瓶和厌氧血培养瓶的组合方法尤其适合苛养细菌的生长，比如：链球菌，尤其是营养变异链球菌。己使用抗菌药物治疗的可疑细菌性心内膜炎患者，血液中的抗菌药物是导致假阴性的最常见原因。所以建议采用含抗菌药物抑制剂的培养基。
6．3．5培养周期
手工法为7天，自动化仪器法为5天。送检血培养申请单中明确疑为真菌感染，或者反复血培养培养阴性，而临床又具有明显系统性炎症症状，应适当延长此类血培养的培养时间(多数双相真菌可在商品化的肉汤需氧瓶中生长，孵育时问需2～4周)。
7结果报告
※要求和建议：一旦出现阳性提示，实验室工作人员必须在60分钟内将初步涂片染色结果报告临床。
血培养的结果，无论是阴性或阳性结果，对患者的治疗都是非常紧急!有条件的医院应通过实验室信息管理系统(LIS系统)和医院信息管理系统(HIS系统)，让临床医生随时掌握血培养检测的进展情况，包括如下情况：
①血培养已开单但未收到标本。
②血培养标本已收到。
③检测中，尚无结果。
④24小时无菌生长。
⑤48小时无菌生长。
⑥72小时无菌生长，建议可送第二套血培养。
⑦阳性报警，分离培养和药敏进行中，并报告初步涂片染色结果。
⑧阳性培养结果(细菌鉴定和药敏试验的最终结果)。
没有LIS系统或者LIS系统不完善的实验室可利用电话联系临床进行报告，其中6～8项为必须报告项目。
7．1分级报告制度
7．1．1紧急口头报告
血培养出现阳性提示时，立即进行革兰染色、镜检，并在60分钟内将结果向临床主管医生或相关临床科室工作人员进行紧急口头(电话)报告。
口头报告记录包含以下内容：
①报告者的全名。
②和临床负责医生联系报告的时间(无论成功或不成功)。
③所联系的临床负责医生的全名或接受报告者的全名。
④报告异常结果并强调其紧急性(培养阳性、革兰氏染色镜检结果等)。
⑤让该医生复述收到的结果。
其他须作紧急口头报告的情况有：
①拒收标本，需要重新采血送检。
②初步报告结果和最终结果不吻合。(必须在书面报告上注明并提供详情)
7．1．2最终书面报告
①培养被取消。
②无生长(孵育时间应报告在内)。
③阳性培养结果(最终鉴定结果、最终药敏结果)。
④其他信息：任何可能影响结果的信息应该包括在内，例如：采血量不足、标本运输时间过长、或其它在“实验室质量保证”中描述的因素。
8实验室质量保证
8．1实验前的质量保证
8．1．1病人评估
各级医疗机构应逐步完善指南，明确需要进行血培养的患者群体，同时指南也应明确菌血症或真菌血症低概率的临床群体。对于菌血症或真菌血症低概率的临床群体不推荐使用血培养。
QA指标举例：怀疑细菌性肺炎病人，其血培养检测被作为初始诊断中的必检项目之一的比例。
8．1．2检测的选择和开单
①向所有使用实验室的医务工作者提供有关何时需要或不需要采集血培养的方案。
②申请单标准化。申请单上的信息需包括：明确的病人类别，样本的种类和细节，需要的特别检查，病人的临床信息。
③医护人员接受相关的培训。
QA指标举例l：符合推荐的血培养套数的病人比例(推荐：2～3套／次)。
QA指标举例2：超过推荐量的病人比例。在诊断初期，推荐连续采集2～3套标本。
如果在48～72小时未得到阳性信息，可再采集2～3套标本。不推荐以“筛查”为目的的血培养。
8．1．3标本的采集
①具备详细的样本采集步骤的操作指南可减少静脉穿刺时发生错误的机会，也减低病人和医护人员的风险。
②提供培训和培训资料。建议使用专门的采血队伍。尽量在抗菌药物使用前采集标本。
QA指标举例1：血培养污染率必须低于3％。
QA指标举例2：低于建议采血量的血培养瓶比例。对于成年人，10毫升／瓶是推荐量。
QA指标举例3：只有一个血培养瓶的血培养标本比例。
QA指标举例4：必须被拒绝的血培养标本比例。
8．1．4标本的运送
血培养标本必须在2小时内送到实验室。
QA指标举例：运输时间超过2小时的标本比例。
8．1．5样本的接收和处理
标本在被送到实验室后需要有合适的接收流程，包括拒收标准，评估是否可被接收，实验室接收记录，接种流程等。当实验室内的处理流程不得不被延迟时，提供文件说明对此类情况的处理方式。被拒收的标本必须立刻通知临床。有些情况下标本可以被接收，但不是理想的标本：血量不足、培养份数不足、单个的需氧血培养瓶或厌氧血培养瓶的标本等，必须在最终报告中指出。在多于推荐的培养套数的情况下，必须提醒临床有继发贫血和增加污染率的风险。有两种方法评价是否足量采集血液：采血瓶重量的变化或体积的变化。重量变化更准确，体积变化更方便直观。
QA指标举例：被拒收血培养标本的临床沟通文件。
8. 2 实验中的质量保证
8. 2．1微生物的检测
※菌株鉴定及药敏结果和初步结果不一致时，实验室主管必须进行复查。
重要信息如染色结果，初步鉴定，包括对初步结果回顾的最终报告。
8．2．2确认结果的可靠性
实验结果的解释：阳性和阴性的。
详细的文件必须包括以上的所有内容。具体的操作必须遵循所选用厂家的有关文件。“有效操作流程准备的规范”请参阅CLSI GP2文件。
检验过程中获得的任何信息必须及时通知临床，但必须说明其只是初步报告。最终结果的报告必须考虑到初步报告，如果不一致，报告前必须经实验室主管审核。在最终报告中必须包括初步报告的信息。
实验室必须给临床医生提供实验结果解释的指导书。(如怎样解读阳性／阴性结果)。指导书中还应该包括关于潜在假阴性假阳性结果及原因，以及其他的用于正确解释结果的信息，如送检样本数量的影响，采血前使用了抗菌药物的影响，以及其他实验室指标的综合分析、血培养对个别细菌或真菌的局限性等等内容。
QA指标举例：重要结果的有效性以及沟通文件；重要结果必须在60分钟内通知临床并详细记录通知的具体信息。
8．3实验后的质量保证
8．3．1报告
血培养的结果在报告前必须被验证。验证规范在使用前必须经过审核。验证后的结果需按标准程序立即向临床通报。报告需使用清晰、完整、标准的术语和书写，最大限度地减少被错误理解的可能性。实验室主管需每日察看有更正的报告。更正报告的总结必须定期完成。
QA指标举例：定期和临床沟通QA条例，从中获得完善条例的机会。通过持续监测QA指标来确认干涉条例在持续改善血培养质量方面的有效性。
8．3．2记录管理
血培养的实验室记录管理文件应包括：遵循当地有关机构的规范保存最终报告，有关记录的储存方式、记录媒介、有效的查阅方式、保存期限、保存期满后的销毁记录。有关记录保存期限请参阅CLSI／NCCLS GP26文件。
8．3．3会诊
当临床需要时，实验室主管应及时参与有疑问的血培养结果的临床讨论，对结果进行进一步的分析，并建议临床参考其它的实验室指标以及跟踪其后的血培养结果。
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